The effects of pre and post vitrification taxol treatment on bovine immature oocyte

هدف از مطالعه حاضر بررسي اثرات درمان تخمک قبل و بعد از شيشه‌اي کردن با تاکسول بر بلوغ تخمک نابالغ گاو بوده است. تخمدان‌هاي گاو از کشتارگاه محلي تهيه و در محفظه ترموستات (30 تا 37 درجه سانتي‌گراد) حاوي سالين فيريولوژيک و آنتي‌بيوتيک به آزمايشگاه منتقل شدند. کمپلکس‌هاي تخمک و سلول‌هاي کومولوس (از فوليکول‌هاي 2 تا 8 ميلي‌متر بزل شده) درجه A انتخاب و بين 6 گروه آزمايشي تقسيم گرديدند. گروه اول (تعداد=100) تخمک‌ها در برنامه بلوغ آزمايشگاهي معمول قرار گرفتند. گروه دوم (تعداد=51) تخمک‌هايي که در معرض محلول‌هاي شيشه‌اي کردن قرار گرفته و سپس در برنامه بلوغ قرار گرفتند. گروه سوم (تعداد=51) تخمک‌هايي که در محيط حاوي 1 ميکرومول تاکسول به مدت 20 دقيقه قرار گرفته و سپس در برنامه بلوغ قرار گرفتند. گروه چهارم (تعداد=50) تخمک‌ها بدون در معرض قرار گرفتن به تاکسول شيشه‌اي شده و سپس گرم شدند و در برنامه بلوغ قرار گرفتند. گروه پنجم (تعداد=57) تخمک‌ها 20 دقيقه در معرض تاکسول قرار گرفته، شيشه‌اي شده و گرم شدند و در برنامه بلوغ قرار گرفتند. گروه ششم (تعداد=58) تخمک‌ها ابتدا شيشه‌اي شده و گرم شدند و به مدت 20 دقيقه در معرض تاکسول قرار گرفته و در نهايت در محيط بلوغ قرار گرفتند. محيط بلوغ تخمک‌ها با دماي 39 درجه سانتي‌گراد، 5 درصد اکسيژن و 95 درصد رطوبت به مدت 24 ساعت بود. در معرض تاکسول قرار دادن تخمک تاثير نامطلوبي بر روي بلوغ تخمک در مقايسه با گروه کنترل نداشته است (P>0.05). اما استفاده از تاکسول اثر بهبود دهنده‌اي بر بلوغ تخمک نابالغ گاو در برنامه شيشه‌اي شدن نداشته است (P>0.05). در مجموع درمان قبل و بعد از شيشه‌اي کردن تخمک با تاکسول تاثير کمک کننده‌اي بر برنامه شيشه‌اي کردن تخمک نابالغ گاو نداشته است.

The aim of the present study was to find the effects of pre and post vitrification taxol treatment on bovine immature cumulus oocyte complexes (COCs). Bovine ovaries were collected from the local slaughterhouse in a container with 30-37 C physiologic saline and supplemented with antibiotics. The grade A aspirated COCs were assigned to 6 experimental groups; The 1st group was control (n=100) in which the COCs were subjected to in vitro maturation (IVM) in oocyte maturation medium (OMM). The 2nd group was the COCs (n=51) that were exposed to vitrification and warming solutions and then subjected to IVM. The 3rd group was the COCs which were incubated in OMM contained taxol (1 μM, n=51) for 20 min then transferred to IVM. The 4th group was the COCs (n=50) that were vitrified, warmed and transferred to IVM. The 5th group (n=57) was the COCs which were incubated in OMM containing taxol (1 μM for 20 min), vitrified (solutions with 1 μM taxol), warmed and transferred to IVM. The last group was the COCs (n=58) that were vitrified and warmed, then were incubated in maturation medium containing taxol (1 μM for 20) and, finally, were transferred to IVM. The COCs of all groups were incubated in OMM for 24 h under a humified (95%) condition with a temperature of 39 C and 5% CO2. Oocyte maturation was not affected by exposing the COCs to vitrification solution or taxol groups compared to control (P>0.05). Vitrification reduced the oocyte maturation rate compared to control (P<0.05). Taxol treatment (before and after vitrification) did not improve the bovine oocyte maturation rate compared to control (P<0.05). The results have shown no beneficial effect of taxol on vitrification of bovine immature oocytes.