تشخيص مولكولي و درمان موفقيت آميز كلاميديوفيلا پسيتاسي (ژنوتيپ B) در يك مورد طوطي خاكستري آفريقايي كنگويي (پسيتاكوس اريتاكوس اريتاكوس)

كلاميديوزيس پرندگان توسط كلاميديوفيلا پسيتاسي و با بالاترين ميزان بيماري در طوطي سانان و كبوتر سانان ايجاد مي‌شود. يك طوطي خاكستري آفريقايي كنگويي 2 ساله با علايم بي اشتهايي، افسردگي، اسهال و سختي در تنفس خفيف مورد معاينه قرار گرفت و بر اساس بررسي‌هاي خون شناسي و بيوشيميايي، تشخيص وجود كم خوني، لوكوسيتوز، هتروفيلي، لمفوپني و مونوسيتوز در پرنده داده شد. با توجه به يافته‌هاي باليني و آزمايشگاهي، بيمار به عنوان حامل گونه‌هاي كلاميديوفيلا تشخيص داده شد. همچنين سوآب تهيه شده از شكاف كامي و كلوآك در واكنش زنجيره‌اي پليمراز تشخيصي (600 جفت باز) به لحاظ كلاميديوفيلا مثبت بود. محصول واكنش زنجيره‌اي پليمراز با واكنش زنجيره‌اي پليمراز بر پايه ژن ompA و با استفاده از پرايمرهاي CTU/CTL (1050 جفت باز محصول واكنش زنجيره‌اي پليمراز) مشخص گرديد. توالي محصول واكنش زنجيره‌اي پليمراز با سكانس به دست آمده از بانك ژني مقايسه شد. درخت فيلوژنتيكي به دست آمده شباهت 100% با ژنوتيپ B به دست آمده از مطالعات قبلي را نشان مي‌داد. پرنده بستري شده و درمان با رژيم داكسي سايكلين به مدت 45 روز و روند نمونه‌برداري هفتگي به منظور تعيين حضور DNA كلاميديوفيلا پسيتاسي در نمونه مدفوع و شكاف كامي انجام شد. اين روند تا زماني كه نمونه‌ها پس از دو هفته منفي شدند ادامه يافت. نتايج آزمايشگاهي و راديولوژي پس از درمان در محدوده طبيعي قرار داشتند. ژنوتيپ B به طور اوليه از خانواده كبوترسانان (فاخته و كبوتر) جدا مي‌شود و هيچ گزارشي مبني بر بيماري باليني طوطي خاكستري آفريقايي به اين ژنوتيپ وجود ندارد. در نتيجه با توجه به دانسته‌هاي ما، اين اولين گزارش از كلاميديوزيس ژنوتيپ B در طوطي خاكستري آفريقايي كنگويي مي‌باشد. �حرايي گروه A را تاييد كردند. مي‌توان چنين نتيجه گرفت كه تجويز تحت مزمن دوزهاي تحت كشنده آميتراز مي‌تواند منجر به كاهش كيفيت اسپرم گردد.

Avian chlamydiosis is caused by Chlamydiophila psittaci with the highest infection rate in parrots (Psittacidae) and pigeons (Columbiformes). A two-year-old Congo African grey parrot was examined since the bird had shown clinical signs of anorexia, depression, diarrhea, and mild dyspnea and based on biochemical and hemathological analysis the bird was diagnosed as having anemia, leukocytosis, heterophilia, lymphopenia and monocytosis. With regards to clinical and paraclinical findings, the case was diagnosed to be carrying Chlamydiophila spp. In addition, choanal cleft and cloaca swabs were positive for Chlamydiophila spp. in a diagnostic polymerase chain reaction (PCR) (600 bp amplicon). Polymerase chain reaction products were typed by ompA gene-based PCR, using CTU/CTL primers (1050 bp amplicon). The PCR product sequence was compared with the sequences obtained from GenBank. The phylogenetic tree has revealed 100% identity with genotype B obtained from previous studies. The bird was hospitalized and treated with doxycycline regimen for 45 days, with a weekly sampling process to trace the presence of C. psittaci DNA in faecal and choanal swabs, this process continued to the point where the specimens turned negative after two weeks. Laboratory and radiology results were within normal limits after the treatment. Genotype B is predominantly isolated from Columbidae and there have not been any reports regarding the clinically affected African gray parrot with this genotype. Subsequently, to the best of our knowledge, this is the first report of chlamydiosis by genotype B on Congo African grey parrot.