بررسي فعاليت ضد باكتريايي موكوس اپيدرم ماهي كپور معمولي (Cyprinus carpiuio)

موكوس اپيدرم ماهي و تركيباتش اولين خط دفاعي در مقابل پاتوژن ها مي باشند. مهمترين تركيبات ايمني ذاتي شامل لايه موكوسي پوست و چندين تركيب ديگر همچون ليزوزيم، ايمنوگلوبولين ها، لكتين ها، پروتئين هاي فاز حاد، و چندين پروتئين ضد ميكروبي ديگر مي باشد. در اين مطالعه روش انتشار ديسك Disk diffusion براي بررسي فعاليت ضدباكتريايي استفاده شد و باكتري هاي بكار گرفته شده شامل باكتري هاي گرم مثبت ,Streptococcus faecium Staphylococcus aureus و باكتري هاي گرم منفي Esherichia coli و Serratia marcescense مي باشد. موكوس از قسمت پشتي بدن بوسيله كاردك اسپاتولا خراشيده شد و با بافر فسفات سديم (PH 7, 0/04 M) مخلوط گرديد، سپس با فيلتر سرنگي با اندازه سوراخ هاي 0/22 ميكرومتر استريل گرديد. براي تعيين حداقل غلظت هاي بازدارندگي، موكوس در رقت هاي 12/5، 25، 50، 100 و 200 ميلي گرم در ميلي ليتر رقيق سازي شد. باكتري ها با غلظت 106 باكتري در هر ميلي ليتر روي محيط كشت نوترينت آگار تلقيح گرديد. رقت هاي مختلف موكوس با روش انتشار ديسك روي محيط كشت قرار داده شدند و بعد از 24 ساعت انكوباسيون در دمايCº 37 قطر هاله هاي ضدرشد اندازه گيري شد. اندازه گيري قطر هاله هاي ضد رشد نشان داد كه بيشترين هاله ضدرشد 3/98 ميلي متر در برابر باكتري E.coli و عدم فعاليت بازدارندگي از رشد در برابر باكتري S.aureus بود.

Fish epidermal mucus and its components provide the first line of defense against pathogens. Key innate immune components include the mucus layer on the skin and serves as a repository of numerous innate immune factors such as lysozyme, immunoglobulins, lectins, C-reactive protein and various other antibacterial proteins. A modified disk diffusion method was used for antibacterial activity. for assay used two Gram-positive bacteria, Streptococcus faecium, Staphylococcus aureus, and two Gram-negative bacteria, Escherichia coli, Serratia marcescense. Mucus was carefully scraped from the dorsal body using a plastic spatula. Mucus mixed with phosphate sodium buffered (0/04 M, PH 7) and filtered (Millex-GV unit 0.22 mm Millipore pore size). Determination of MIC was made by the serial dilution method. The samples concentrations tested were 200, 100, 50, 25 and 12/5 mg/ml. Microorganisms (106 CFU/ml) were placed on the nutrient agar medium and samples concentrations by the disk diffusion method were placed on the petridish. After incubation for 24 h at 37 ºC, inhibition zones diameter were determined measuring of the inhibition zones diameter showed that the most inhibition zone was 3/98 mm, against gram-negative E.coli and lowest inhibition zone was 0 mm, against gram-positive S.aureus